⭐ Bagian Bagian Sterilizer Dan Fungsinya

Berikutini fungsi dan manfaat jam tangan di masa kini yang perlu Anda ketahui, yaitu: 1. Aksesoris pelengkap penampilan. Jam tangan memiliki fungsi sebagai aksesoris yang dapat melengkapi penampilan Anda. Baik wanita maupun pria, keduanya dapat menggunakan jam tangan untuk mendukung mode gaya dalam kegiatan atau acara apapun. 2. Penunjuk waktu. BagianBagian Bunga. Bunga terdiri dari dua bagian, yaitu fertil dan steril. Bagian fertil mencakup mikrosporofil yang berperan sebagai benang sari dan makrosporofil yang berperan sebagai sebagai putik yang tersusun atas daun buah. Sedangkan bagian steril mencakup ibu tangkai bunga, tangkai bunga, dasar bunga, daun pelindung, daun tangkai, dan Bagianbagian penting dari printer inkjet dan fungsinya : Kepala cetak/kartrid. Print head merupakan bagian terpenting dari sebuah printer inkjet dan harganya biasanya paling mahal dibandingkan dengan komponen lainnya. Print head ini memiliki fungsi menulis atau menyemprotkan tinta pada kertas pada saat proses pencetakan. Bedanyahanya terdapat mode sterilisasi berbeda dengan menggunakan ozon di bagian kedua. Pemancar panas yang ada pada dry heat sterilizer dihasilkan dari sinar infra merah dengan suhu tinggi dengan rancangan khusus sehingga dapat menyebar ke seluruh ruangan dan juga mengenai setiap sisi dari benda atau alat media yang diseterilkan. Berikutini yang bukan termasuk bagian dari tumbuhan adalah . Bagian- Bagian Tumbuhan dan fungsinya. DRAFT. 9th - 12th grade. 0 times. Science. 0% average accuracy. 3 days ago. desianggraini764_94982. 0. Save. Edit. Edit. Bagian- Bagian Tumbuhan dan fungsinya DRAFT. 3 days ago. by desianggraini764_94982. Bagianbunga yang memiliki nama latin corolla ini merupakan salah satu yang mencolok karena berada di area luar. Ukurannya jauh lebih besar dibandingkan dengan komponen bunga lainnya. Mahkota bunga diciptakan berwarna-warni agar dapat menarik perhatian serangga penyerbuk di sekitarnya. Selain itu, mahkota bunga juga berfungsi untuk melindungi MesinMilling. Bagian-Bagian Mesin Milling - Mesin milling atau mesin frais adalah sebuah mesin yang digunakan untuk pengerjaan penyayatan pada permukaan benda berupa bidang datar, tegak lurus, atau permukaan miring. Penyayatan dilakukan oleh sebuah pisau frais yang berputar pada sumbu mesin. Prinsip kerja mesin milling yaitu benda kerja dicekam pada meja mesin dan ditahan oleh ragum (vice Perangkattersebut digunakan untuk mengontrol steam dalam sterilizer dengan menggunakan parameter waktu, tekanan, dan suhu. Pengontrolan dalam proses pengolahan kelapa sawit, diatur melalui bagian-bagian sterilizer. Artikel ini akan menjelaskan mengenai bagian-bagian apa saja yang terdapat dalam panel control rebusan beserta fungsinya. ReadOr Download Gallery of struktur dan fungsi gigi info pendidikan dan biologi - Susunan Gigi Manusia | bagian dan fungsi gigi gigi susu dan gigi dewasa semua tentang gigi, alat pencernaan pada manusia, anatomi dasar dan fisiologi sistem organ tubuh manusia pintar biologi, ukuran lidah manusia normal blog klinik dokter gigi part 3, FhBlcg. Canning Process of Vergara-Balderas, in Encyclopedia of Food and Health, 2016EquipmentSterilizers of different types are used on conventional canning. Both batch and continuous systems are available. In batch retorts, cans are loaded in crates and introduced into the retort; they are heat-treated and then unloaded. Examples of batch retorts are the vertical and horizontal steam or water still retorts; in this equipment, crates of containers are loaded into the retort, closing the vessel, and heating the containers; then the cooling is carried out by cutting off the steam and adding cool water. In addition, agitating batch retorts are also available. On the other hand, in continuous retorts, filled sealed containers are automatically and continuously moved from atmospheric conditions to a pressurized steam environment, held during the process time, and then moved again into an atmospheric condition for further handling. Examples of continuous retorts are the continuous rotary cooker and the hydrostatic sterilizer. It is common to use steam or hot water as the heating medium or, less usually, a mixture of steam and air. Food containers may be held stationary or aseptic systems consist of heaters, a holding tube, and coolers. Equipment used for heating during aseptic processing of foods includes several types of heat exchangers; among these are the scrapped surface, the plate, and the tubular heat exchangers; these are indirect heat exchangers because heating medium does not mix with food. Also, there is equipment using direct steam injection in the is normally carried out at temperatures under 100 °C, and it can use hot water baths. At the end of the thermal process, cold water is used for cooling. During the cooling stage of metal and glass containers, it is advisable to remove them at temperatures around 38 °C, so surface water evaporates, preventing corrosion problems. Pasteurization of bulk liquids can be accomplished in heat exchangers; they use as heating medium steam or hot type and size of heating equipment sterilizer has its particular characteristics and must be known to establish a specific thermal process. With this information, the limits of accuracy of both time and temperature given to the food container can be full chapterURL hazards ProfessorCrispian Scully CBE, MD, PhD, MDS, MRCS, FDSRCS, FDSRCPS, FFDRCSI, FDSRCSE, FRCPath, FMedSci, FHEA, FUCL, FBS, DSc, DChD, DMed HC, Dr hc, in Scully's Medical Problems in Dentistry Seventh Edition, 2014Infection Control MeasuresThe four UK Health Departments’ decontamination policies are generally driven by the European Union’s Medical Devices Directive MDD 93/42/EEC and the Medical Device Regulations MDR 2005 Box HTM 01-05’, published by the UK Department of Health in 2008 as Health Technical Memorandum 01-05 Decontamination in primary care dental practices’ and superseded by a new edition published in April 2009 accessed 30 September 2013, sets the standards for control includes the safe disposal of sharps and disposable items, and the cleaning and sterilization of reusable dental instruments and devices. Care must be taken to ensure that all instruments are cleaned prior to sterilization, in a safe manner to avoid injury. Use of closed-system cassettes reduces the risk to the DHW during the execution of infection control. When using ultrasonic cleaners, washers and sterilizers, it is important always to follow the manufacturer’s instructions. Assurance of sterility of instruments and devices can be obtained through the use of one of several tests; these tests must be performed regularly to ensure that the sterilizer is cleaning all instruments and devices and that these are safe for use on patients. Disinfection after cleaning reduces the number of viable microorganisms on instruments, making them safer to handle; it is not acceptable to use chemical disinfectants unless this is specifically recommended by the manufacturer, however, and therefore thermal disinfection is disinfection is best achieved by using an automated washer–disinfector WD, which precedes the use of autoclaves sterilizers. The high temperature of the water and chemical additives in these devices clean and disinfect the types of sterilizer are found in primary care dentistry The vacuum benchtop sterilizer type B is suitable for wrapped and unwrapped solid items, hollow items and porous loads, and as such is particularly valuable for sterilizing dental handpieces. It is the standard for use in dental practice, since wrapped items can be readily transported, remain sterile up to the point of use, and can be stored for use at a later date, minimizing the risk of cross-contamination.The type N benchtop sterilizer is an unwrapped instrument and utensil sterilizer suitable for solid devices that are not wrapped. Provided that the proper irrigation and cleaning of lumens and internals of handpieces has been achieved in combination with a WD, handpieces may also be processed in a type N sterilizer. Where remaining hollow items used in the practice are single-use, a type N sterilizer may be the appropriate solution, although this type of technology is being increasingly overtaken by the vacuum-type sterilizer type B. Instruments processed in a type N sterilizer should ideally be used directly from the sterilizer, as transportation and storage of sterilized items may pose a risk of re-contamination, and should be risk-assessed and controlled to minimize the instruments cannot be steam sterilized and must then be decontaminated according to the manufacturer’s instructions. If sending instruments for repair or disposal, decontaminate full chapterURL Flávio de Magalhães Brito, Douglas Magagna, in Clinical Engineering Handbook, 2004Necessary EquipmentMaintenance of sterilizers typically involves measurement of Electrical parameters; water and air flow; static and dynamic pressures; position; force; speed and acceleration; distance; frequency; weight; and temperature. To maintain sterilizers and other equipment related to infection control, the following tools should be available•Pressure meters for steam; water; medical gases; compressed air and clinical vacuum; and heating ventilation and air conditioning HVAC systems•Manometers to measure differential pressure across the filters of HVAC systems, water, steam and pneumatic systems, ventilators, and anesthesia equipment.•Flow meters for water; medical gases; medical compressed air and vacuum; and hydraulic circuits•Particulate air meter for monitoring the quality of treated air atmospheres with ventilation systems or conditioned air and other isolated areas•Air sample collectors•Thermometers or thermocouples for temperature measurement of air, water, and steam at specific points inside equipment or systems•Chronometers to measure cycle times•Vacuum cleaner•Chemical products for cleaning, disinfecting, and sterilizing surfaces of equipment•Electrical safety analyzerRead full chapterURL oxide EO sterilization of healthcare Mendes, ... Silva, in Sterilisation of Biomaterials and Medical Devices, 2012AerationAeration can be performed in the sterilizer or in a separate aeration chamber or room, under controlled conditions. All EO sterilized materials should be properly aerated before handling and use. The aeration time depends on many variables, including•composition, density, porosity, dimensions, surface area and design configuration of the material. Metal and glass are two materials that retain very low EO quantities. Polymers adsorb and desorb EO at higher but variable rates. It is described that polyvinyl chloride, polystyrene and rubber retain more EO than polyethylene, polyurethane, silicone, acrylic butyl styrene and polycarbonate, and the latter retain more EO than nylon, paper or cotton;•packaging material wrapping material and/or sterilization container system;•sterilizing conditions temperature, sterilant concentration, exposure time;•aeration conditions;•size, configuration of the load, and number of highly EO-absorptive materials being aerated; and•acceptable limits of residues for the intended use of the device Ernest, 1973; Handlos, 1980; Scott, 1982; Aeschlimann, 1984; Muzeni, 1985; Vink and Pleijsier, 1986; Buben et al. , 1999; Booth, 2000; Lucas et al., 2003; Rogers, 2005; Mendes et al., 2007, 2008; ISO 11135-1, 2007; ANSI/AAMI ST 41, 2008; ISO 10993-7, 2008; AAMI TIR 15, 2009; AAMI TIR 16, 2009.Read full chapterURL Darvell DSc CChem CSci FRSC FIM FSS FADM, in Materials Science for Dentistry Tenth Edition, 2018• Lead-tinThe molten metal formerly used in instrument sterilizers 21§ appears to have been something like a 5050 alloy by mass of lead and tin a formulation corresponding to what is called “soft solder”, at least in some implementations.[38] Such alloys have a eutectic temperature of 183 °C Fig. and although often described as melting at that point they would require a somewhat higher temperature ~ 240 °C at 5050 to be fully liquid, which would have provided a reasonable indicator of efficacy 21§ Phase diagram for the lead-tin a molten alloy pool, on being left exposed to the air, will develop a dross layer. This will consist of SnO2, SnO coating finely dispersed Pb, and a transition layer of SnO plus Pb-Sn.[39] This material adhered to instruments as they were removed from the bath, frequently leaving contamination invisible to unaided visual inspection, even though gross contamination might be shaken off. Thus it can be expected that, for example, root canals became contaminated with metallic tin and lead as well as oxide. Such residues, and their effects, would persist full chapterURL sterilization techniques for biomaterials and medical devicesS. Lerouge, in Sterilisation of Biomaterials and Medical Devices, Vaporized chemical sterilant systemsTo overcome the limitations of liquid sterilization, sterilizers using vaporized hydrogen peroxide VHP were proposed in the mid-1980s, using various technologies to transform liquid H2O2 around 30–35% concentration into vapor and delivering it in the chamber. One method uses a deep vacuum to pull liquid hydrogen peroxide from a disposable cartridge through a heated vaporizer and then, following vaporization, into the sterilization chamber. In another approach, VHP is brought into the sterilization chamber by a carrier gas such as air using either a slight negative pressure vacuum or slight positive pressure. Applications of this technology include vacuum systems for industrial sterilization of medical devices and atmospheric systems for decontamination of large and small areas French et al., 2004. VHP has several advantages rapid cycle time 30–45 min, low temperature, environmentally safe by-products only water and oxygen, relatively good material compatibility and ease of operation, installation and monitoring. However, it also has limitations, mainly lower penetration capabilities when compared with EO. It also shares Sterrad incompatibility with cellulose and nylon. In fact, these systems are very close to Sterrad systems, without the advantage of elimination of H2O2 by plasma, but with the advantage of larger chambers that enables to process more devices at the same time. Further investigation of this method is required to demonstrate both safety and effectiveness. VHP has not yet been cleared by FDA for sterilization of medical devices in healthcare facilities Rutala, 2008. Similarly, vaporized peracetic acid has also been recently proposed, but is not yet full chapterURL of PharmaceuticalsShruti Moondra, ... Rakesh K. Tekade, in Dosage Form Design Parameters, Empty Chamber Heat Distribution StudiesThe principal objective of this test is to ensure whether the sterilizer is capable enough to attain a temperature of 121°C with pressure of kg/cm2. In this test the temperature spread of 121–124°C is determined and at any location wherein the temperature indicator is placed does not indicate the sterilization temperature, that location may be considered as the cold spot throughout the sterilization process. For this test, acceptance criteria is met only when there is uniform heat distribution in the sterilizer throughout the hold period, and temperature at each temperature mapping probe should be within the temperature range of 121–124°C Shintani, 2012.Read full chapterURL TREATMENT Ultra-high Temperature UHT Swartzel, in Encyclopedia of Food Sciences and Nutrition Second Edition, 2003Holding SectionThe holding section is a pipeline section located immediately downstream from the sterilizer. It is designed to insure that all product is held at, or above, the sterilization temperature for the time equal to, or greater than the scheduled process time. The tube is sloped upward toward the discharge end. The upward slope insures that vapor cannot be trapped. A vapor pocket in the holding tube would permit product to move through the tube faster than if the holding tube contained product public safety destruction of pathogenic organisms, mainly Clostridium botulinum, regulatory specification calls for a holding tube to be sized to hold the fastest-moving particle in laminar flow for the minimum specified time. See Clostridium Botulism.Read full chapterURL Meyler's Side Effects of Drugs Sixteenth Edition, 2016Drug studiesObservational studiesGlutaral-based products are typically used in hospitals and clinics as cold sterilizers, to disinfect and clean heat-sensitive medical devices. Glutaral is a potent sensitizer and respiratory irritant, and it has been implicated as a cause of asthma in health-care workers. This has led to a search for alterative disinfectants for instrumental sterilization [7].However, glutaral continues to be used as a disinfectant and sterilizer, particularly in developing countries. This requires occupational health monitoring and establishment of safe practices for its 169 nurses working in 17 hospitals, especially in endoscope units, 68% had symptoms, 38% two or more. The major complaints were eye irritation in 49%, skin discoloration or irritation in 41%, and cough or shortness of breath in 34% [8]. Complaints were not related to habits, atopic status, or duration of exposure. In two hospitals, the time-weighted average concentrations were estimated. The 10-minute time-weighted average was below the UK occupational exposure standard of ppm. In a similar survey of 150 staff in two Middlesex hospitals who were exposed to glutaral, the rate of complaints was in the same range [9].In a Canadian study to assess the effect of work practices and general ventilation systems on employees’ exposure to glutaral, air samples were taken in five hospitals [10]. The presence of local or general ventilation, air changes per hour, the quantity of glutaral used, and work practices were recorded. Work practices constituted the most important factor affecting the degree of exposure to glutaral. In locations where “poor” or “unsafe” practices were employed, glutaral concentrations were much higher and there was an increased prevalence of headache and itchy eyes among full chapterURL for Rodents∗Cassie Boyd, ... Chriss Vowles, in Gnotobiotics, 2017CyclesNote The cycles below are for a Finn Aqua 91515 N-B-LSR bulk sterilizer. Autoclave parameters must be validated on each autoclave and therefore may differ for autoclaves in other Supply Pulsed air removalFirst vacuum level pounds per square inch absolute; Psia vacuum hold time s 15First pressure level Psia pressure hold time s 5Second vacuum level Psia vacuum hold time s 15Second pressure level Psia pressure hold time s 5Third vacuum level Psia vacuum hold time s 15Third pressure level Psia pressure hold time s min 25Temperature °C Vacuum dryingVacuum level Psia hold time min 15Jacket heating CycleNote This cycle requires a load probe. The sterilization time does not begin until the load probe reaches 129° Forced air removalTime min 15Temperature °C min 40Temperature °C Slow exhaustSlow exhaust rate Psia/min Smaller autoclaves may experience excessive boilover at this °C 100Read full chapterURL Irena Agustiningtyas Capaian Pembelajaran Setelah mempelajari bab ini mahasiswa dapat Menjelaskan definisi sterilisasi Menjelaskan jenis-jenis sterilisasi dan fungsinya Menjelaskan perbedaan sterilisasi dan desinfeksi Melakukan sterilisasi dan desinfeksi dengan benar Pendahuluan Sterilisasi di dalam laboratorium mikrobiologi menjadi bagian yang penting untuk menghindari hasil positif palsu. Sterilisasi terhadap alat dan bahan sebelum pelaksanaan kegiatan praktikum mikrobiologi membantu hasil atau identifikasi yang akurat terhadap pemeriksaan mikrobiologi. Demikian pula proses desinfeksi dan teknik aseptik oleh praktikan juga tidak dapat dilupakan karena akan mempengaruhi hasil. Sehingga dalam materi ajar ini akan disampaikan mengenai sterilisasi, desinfeksi, dan teknik aseptik. Sterilisasi dan Desinfeksi Sterilisasi didefinisikan sebagai upaya untuk membunuh mikroorganisme termasuk dalam bentuk spora. Desinfeksi merupakan proses untuk merusak organisme yang bersifat patogen, namun tidak dapat mengeliminasi dalam bentuk spora Tille, 2017. Jenis Sterilisasi dan Fungsinya Sterilisasi dapat dilakukan baik dengan metode fisika maupun kimia Tille, 2017. a. Sterilisasi dengan metode fisika dapat dilakukan dengan cara 1. Pemanasan A. Pemanasan kering i. Pemijaran Metode ini dengan memanaskan alat biasanya berupa ose di atas api bunsen sampai ujung ose memijar. Gambar 7. Pemijaran ose ii. Pembakaran Pembakaran dilakukan untuk alat-alat dari bahan logam atau kaca dengan cara dilewatkan di atas api bunsen namun tidak sampai memijar. Misalkan a melewatkan mulut tabung yang berisi kultur bakteri di atas api Bunsen; b memanaskan kaca objek di atas api busnen sebelum digunakan; c memanaskan pinset sebelum digunakan untuk meletakkan disk antibiotic pada cawan petri yang telah ditanam bakteri untuk pemeriksaan uji kepekaan antibiotik. iii. Hot air oven Sterilisasi dengan metode ini digunakan untuk benda-benda dari kaca/gelas, petri, tabung Erlenmeyer, tidak boleh bahan yang terbuat dari karet atau plastic. Oven Suhu 160-1800C selama jam. Alat-alat tersebut terlebih dahulu dibungkus menggunakan kertas sebelum dilakukan sterilisasi. Gambar 8. Hot air oven iv. Insinerator Bahan-bahan infeksius seperti jarum bekas suntikan yang ditampung dalam safety box biohazard, darah, dilakukan sterilisasi dengan menggunakan insinerator. Hasil pemanasan dengan suhu 8700-9800 C akan menghasilkan polutan berupa asap atau debu. Hal ini yang menjadi kelemahan dari sterilisasi dengan metode insenerasi. Namun, metode ini dapat meyakinkan bahwa bahan infeksius dapat dieliminasi dengan baik yang tidak dapat dilakukan dengan metode lainnya. B. Pemanasan basah Merupakan pemanasan dengan tekanan tinggi, contohnya adalah dengan menggunakan autoklav. Sterilisasi dengan metode ini dapat digunakan untuk sterilisasi biohazard bakteri limbah hasil praktikum dan alat-alat yang tahan terhadap panas bluetip, mikropipet, pembuatan media, dan sterilisasi cairan. Pemanasan yang digunakan pada suhu 1210C selama 15 menit Tille, 2017. Pemanasan basah dapat menggunakan i. Autoklaf manual Metode ini menggunakan ketinggiian air harus tetap tersedia di dalam autoklaf. Sterilisasi menggunakan autoklaf manual tidak dapat ditinggal dalam waktu lama. Autoklaf manual setelah suhu mencapai 1210C setelah 15 menit, jika tidak dimatikan maka suhu akan terus naik, air dapat habis, dan dapat meledak. ii. Autoklaf digital/otomatis Alat ini dapat diatur dengan suhu mencapai 1210C selama 15 menit. Setelah suhu tercapai, maka suhu akan otomastis turun sampai mencapai 500C dan tetap stabil pada suhu tersebut. Jika digunakan untuk sterilisasi media, suhu ini sesuai karena untuk emmbuat media diperlukan suhu 50-700 C. Gambar 9. Autoklaf manual dan otomatis 2. Radiasi Radiasi ionisasi digunakan untuk mensterilkan alat-alat berupa bahan plastic seperti kateter, plastic spuit injeksi, atau sarung tangan sebelum digunakan. Contoh radiasi ionisasi adalah metode pada penggunaan microwave yaitu dengan menggunakan panjang gelombang pendek dan sinar gamma high energy. 3. Filtrasi penyaringan Metode ini digunakan untuk sterilisasi bahan-bahan yang sensitive terhadap panas seperti radioisotope, kimia toksik. i. Filtarsi berupa cairan dengan menggunakan prinsip melewatkan larutan pada membran selulosa asetat atau selulosa nitrat. ii. Filtarsi berupa udara dengan menggunakan high-efficiency particulate air HEPA untuk menyaring organisme dengan ukuran lebih besar dari µm dari ruang biology savety cabinet BSCs b. Sterilisasi dengan metode kimiawi 1. Uap formaldehide atau hydrogen peroksida digunakan untuk sterilisasi filter HEPA pada BSCs. 2. Glutaraldehyde bersifat sporisidal, yaitu membunuh spora bakteri dalam waktu 3-10 jam pada peralatan medis karena tidak merusak lensa, karet, dan logam, contohnya adalah alat untuk bronkoskopi. Jenis Desinfeksi dan fungsinya Desinfeksi dengan metode fisika dilakukan dengan 3 cara yaitu Merebus pada suhu 1000 C selama 15 menit dapat membunuh bakteri vegetative. Pasteurisasi pada suhu 630C selama 30 menit atau 720C selama 15 detik yang berfungsi membunuh patogen pada makanan namun tidak mengurangi nutrisi dan rasa dari makanan tersebut. Menggunakan radiasi non-ionisasi seperti ultraviolet UV. Sinar ultraviolet memiliki panjang gelombang yang panjang dengan low energy. Contohnya adalah untuk membunuh bakteri yang ada di permukaan BSCs. Sehingga, sebelum menggunakan BSCs, sinar UV harus dinyalakan terlebih dahulu yaitu kurang lebih 30 menit sebelum penggunaan. Desinfeksi dengan metode kimiawi Desinfeksi dengan metode kimiawi dapat dilakukan dengan menggunakan desinfektan. Bahan yang termasuk dalam desinfektan yaitu Etil alcohol 70% lebih efektif dibandingkan dengan etil alcohol 95%, hal ini dikarenakan kemampuan air H2O dalam menghidrolisis ikatan protein dari mikroorganisme. Sehingga, proses membunuh mikroorganisme menjadi lebih efektif. Aldehid yang berupa glutraldehid dan formaldehid memiliki kemampuan iritasi yang besar sehingga tidak digunakan sebagai antiseptic. Halogen, seperti chlorin dan iodine merupakan desinfektan yang seringali digunakan. Persiapan sebelum dilakukan operasi seringkali menggunakan kombinasi etil alcohol 70% diikuti dengan povidon-iodine. Logam berat, contohnya adalah air raksa. Karena logam ini sangat berbahaya bagi lingkungan, maka penggunaannya sebagai desinfektan tidak direkomendasikan. Namun dalam keadaan konsentrasi sangat rendah misalkan silver nitrat 1%, masih efektif digunakan dalam pengobatan konjungtivitis neonatorum karena Neisseria gonorrhoeae. Desinfektan yang digunakan pada kulit disebut sebagai antiseptik. Antiseptik didefinisikan sebagai bahan yang digunakan untuk membunuh mikroorganisme yang menempel pada jaringan hidup, contohnya adalah kulit. Mekanisme kerja dari antiseptic sebagian besar adalah menghambat pertumbuhan dari mikroorganisme bakteriostatik namun dapat juga membunuh bakteri bakterisidal. Referensi Tille, P. M. 2017. Bailey & Scott’s Diagnostic Microbiology. In Basic Medical Microbiology fourteenth, p. 45. St. Louis Missouri Elsevier. Eva Febrina Sinulingga “Penggunaan Control Valve Pada Sterilizier Dengan Fig 360 – 104 Untuk Mengontrol Aliran Steam” Aplikasi PTPN IV Unit Usaha Adolina Sumatera Utara, 2010. Tipe horizontal, yang merupakan bejana horizontal dan memiliki keuntungan antara lain - Kapasitas sterilizer antara 15 – 30 ton TBS - Pengoperasian lebih mudah dan praktis - Buah tidak bersinggungan langsung dengan dinding, sehingga bahan olah tidak mungkin menyebabkan bejana menjadi korosi. - Pengisian uap masuk dan pembuangan uap keluar serta pembuangan air kondensat lebih muda dilakukan. Pada gambar [1] dapat dilihat jenis sterilizer tipe horizontal seperti yang dibawah ini Gambar Sterilizer tipe horizontal Bagian – Bagian dari Sterilizer 1. Body Body sterilizer merupakan lembaran – lembaran dari plat – plat yang di rol, kemudian disambungkan membentuk silinder yang panjang. Saluran pemasukan uap Eva Febrina Sinulingga “Penggunaan Control Valve Pada Sterilizier Dengan Fig 360 – 104 Untuk Mengontrol Aliran Steam” Aplikasi PTPN IV Unit Usaha Adolina Sumatera Utara, 2010. Saluran uap ini dilas dengan body dan dibuat flensa untuk menyambungkan ke pipa uap masuk. Selain saluran masuk juga ada saluran air kondensat dan alat pengukur tekanan. 2. Pintu Pintu dibuat seperti potongan bola, yang terletak di kiri dan kanan. Pintu merupakan sarana untuk mempermudah pemasukan lori yang berisi sawit. 3. Locking Ring Fungsi locking ring adalah untuk memperketat pintu dan untuk menjaga uap tidak tembus dari sela – sela pintu. 4. Rel dan Lori Untuk mempercepat proses perebusan maka buah sawit dimasukkan ke dalam lori, sehingga waktu yang dibutuhkan untuk mengeluarkan buah tidak lama. Akan tetapi, tanpa adanya rel lori juga susah untuk dimasukkan dan dikeluarkan dari sterilizer Komponen - Komponen Pembangun Utama Control Valve FIG 360 – 104 Air To Close Control valve adalah valve yang mengendalikan laju arus sesuai dengan tekanan udara dari positioner. Control Valve terdiri dari tiga bagian utama, yaitu bagian actuator, bonnet dan body. Sistem kerjanya adalah dengan menaikan tekanan udara operasi, plat diafragma turun menekan pegas yang dihubungkan dengan plat diafragma, sehingga menggerakkan tangkai actuator. Kemudian tangkai itu berhenti dimana posisi gaya pegas itu seimbang dengan tekanan udara. Bukaan Control valve tergantung pada Eva Febrina Sinulingga “Penggunaan Control Valve Pada Sterilizier Dengan Fig 360 – 104 Untuk Mengontrol Aliran Steam” Aplikasi PTPN IV Unit Usaha Adolina Sumatera Utara, 2010. gerakan tangkai valve. Dan apabila terjadi suatu kesalahan, maka valve ini secara otomatis akan tertutup. Control Valve ini dalam penggunaannya juga ditunjang dengan pemakainan controller yang memegang perannan penting setelah recorder dan indicator. Yang terpasang pada panel control. Sedangkan alat penunjang lain disebut by pass valve yang terpasang di pasangan. Bagian – bagian pembangun Control Valve FIG 360 – 104 dapat kita lihat dibawah ini [5]. Gambar Control Valve Keterangan gambar 1. Diaphragm Casings 2. Diaphragm Eva Febrina Sinulingga “Penggunaan Control Valve Pada Sterilizier Dengan Fig 360 – 104 Untuk Mengontrol Aliran Steam” Aplikasi PTPN IV Unit Usaha Adolina Sumatera Utara, 2010. 3. Diaphragm Plate 4. Actuator Spring 5. Actuator Steam 6. Spring Seat 7. Spring Adjustor 8. Steam Conector 9. Yoke 10. Travel Indikator 11. Indikatos Skale 12. Valve Plug Steam 13. Packing Flange 14. Actuator Yoke Locknut 15. Packing 16. Packing Box 17. Bonnet 18. Bonnet Gasket 19. Spiral Wound Gasket 20. Cage Gasket 21. Valve Plug 22. Cage 23. Seat Ring 24. Valve Body Eva Febrina Sinulingga “Penggunaan Control Valve Pada Sterilizier Dengan Fig 360 – 104 Untuk Mengontrol Aliran Steam” Aplikasi PTPN IV Unit Usaha Adolina Sumatera Utara, 2010. Anilisa Data

bagian bagian sterilizer dan fungsinya